Abstract

Today viral fish diseases cause major losses in the world aquaculture. Pathogen spread often occurs during the transportation of fish from infected farms to the disease-free ones. Therefore, the import of fish stocking material to Russia from countries with a different epidemic situation requires risk-based monitoring and forecasting. Diagnostics is of primary importance in the complex of measures to prevent the spread of viral infections in fish. To date, laboratory diagnostics of viral fish diseases is based on pathogen isolation and its identification using serological methods which require a lot of time and are performed only in large research institutes with specialized laboratories. Molecular diagnostic methods are more sensitive and high-performance. The article presents the results of using reverse transcription polymerase chain reaction to detect a number of highly dangerous viral diseases of fish (Salmonidae). As a result of this work, primers were selected and the temperature and time conditions of the reaction were optimized for the identification of infectious hematopoietic necrosis, viral hemorrhagic septicemia and infectious salmon anemia. The results obtained during the research allowed us to establish that this diagnostic method is highly specific with analytical sensitivity to infectious salmon anemia virus of 2.5 lg TCD50/сm3, to infectious hematopoietic necrosis – 2.9 lg TCD50/сm3 and to viral hemorrhagic septicemia – 4.2 lg TCD50/ сm3. The described method was used to identify reference and field strains available at the FGBI ARRIAH Reference Laboratory for Aquaculture Diseases and isolated in different years in fish farms in the territory of the Russian Federation. The research data correlated with the results obtained from virus neutralization in cell culture and ELISA performed using commercial kits. The proposed method of RT-PCR allows to detect pathogens both in fish with pronounced clinical signs and in latent virus carriers.

Highlights

  • Pathogen spread often occurs during the transportation of fish

  • Diagnostics is of primary importance in the complex

  • of measures to prevent the spread of viral infections in fish

Read more

Summary

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

В работе использовали: штамм «Оренбург/14» вируса весенней виремии карповых (ВВК), штамм «Аркус 32/87» вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани (ИНГТ), штамм «FLD/2004» вируса инфекционного некроза поджелудочной железы (ИНПЖ) и штамм «Аланд» вируса геморрагической септицемии лососевых (ВГС), находящиеся на хранении в коллекции штаммов микроорганизмов ФГБУ «ВНИИЗЖ», а также штамм «CCBB» вируса инфекционной анемии лососевых (ИАЛ), полученный в 2019 г. из Американской коллекции типовых культур (АТСС). Выделение суммарной РНК исследуемых вирусов проводили с использованием коммерческого набора реагентов «РНК-Экстран» («Синтол», Россия) согласно. Для получения кДНК на матрице выделенной РНК использовали комплект реагентов «ОТ-1» («Синтол», Россия) согласно рекомендациям фирмы-производителя. Реакционную смесь для постановки ПЦР готовили в объеме 25 мкл с использованием набора реактивов «Encyclo Plus PCR kit» (ЗАО «Евроген», Россия) согласно инструкции к набору. ПЦР проводили в термоциклере «PTC-200 DNA Engine Cycler» (Bio-Rad, США). Последовательности праймеров, используемых для постановки ПЦР, были опубликованы ранее [6, 7, 8]. Полученные в ходе ПЦР ампликоны анализировали с помощью электрофореза в 2%-м агарозном геле с добавлением бромистого этидия (10 мг/мл) в течение 1 ч при напряжении 10 V/см в 1× трисборатном буфере. Таблица 1 Структура праймеров для выявления возбудителей инфекционной анемии лососевых, вирусной геморрагической септицемии и инфекционного некроза гемопоэтической ткани. Emmenegger et al [7]

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ
Заключительный синтез
Full Text
Published version (Free)

Talk to us

Join us for a 30 min session where you can share your feedback and ask us any queries you have

Schedule a call