Abstract
Establishment of a bee collection (Hymenoptera, Apoidea) as part of a biodiversity study. In the framework of the European ALARM project, we used sampling methods to assess pollinator diversity (bees and syrphid flies) and abondance, and therefore started reference collections. Identification required killing, pinning, and adequate preparation of the insects sampled. We present a set of guidelines for the preparation of bee specimens and a protocol for processing specimens caught in liquid media. We also provide recommendations to fill out labels for collection purposes. Finally, we suggest some techniques that can help keeping a well-curated bee collection.
Highlights
In the framework of the European ALARM project, we used sampling methods to assess pollinator diversity and abondance, and started reference collections
We present a set of guidelines for the preparation of bee specimens and a protocol for processing specimens caught in liquid media
We provide recommendations to fill out labels for collection purposes
Summary
Les conséquences du déclin de la biodiversité sur les écosystèmes sont de plus en plus perceptibles (Stuart Chapin et al 2000) alors même que les conséquences positives de la biodiversité sur les activités humaines commencent à être reconnues et même chiffrées en termes économiques (Costanza et al 1997). De plus ce type de récoltes est souvent réalisé à l’aide coupelles colorées, par attraction des insectes dans un liquide (eau + détergent); aussi les spécimens capturés sont conservés dans de l’alcool (en général une solution aqueuse d’éthanol). Protocole de préparation (Figure 2): 1- Récupérer le contenu du flacon dans une passoire à maille fine (pour éviter de perdre les abeilles de taille inférieure à 2 mm) et rincer à l’aide d’une pissette d’eau distillée; 2- Puis verser le contenu de la passoire dans un récipient avec de l’eau tiède (30 °C environ) et quelques gouttes de liquide vaisselle; agiter pendant une minute (par exemple à l’aide d’un agitateur magnétique); 3- Reverser ensuite le contenu dans la passoire et rincer sous un filet d’eau en ayant soin de protéger les échantillons avec la main; 4- Egoutter la passoire et essuyer l’excès d’eau avec un torchon; 5- Rincer avec de l’éthanol 96 %; 6- Placer ensuite les insectes dans du papier absorbant et remuer les spécimens pour un premier séchage; changer le papier jusqu’à absorption quasi totale du liquide; 7- Faire une poche avec une serviette en papier propre et agiter les insectes énergiquement (mais précautionneusement) pendant 20secondes environ; 8- Un brossage, à l’aide d’un pinceau, permet de peigner et de séparer les poils agglutinés. Les genitalia deviennent plus facilement extractibles car les tissus abdominaux sont assouplis
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