Abstract

Досліджено вплив іонів Cu2+ на внутрішньоклітинний гомеостаз Са2+ та перекисне окиснення ліпідів в умовах різної кислотності середовища. Показано, що зниження рН середовища зумовлює підвищення [Ca2+]cyt і може бути відгуком клітин кореня на кислотний стрес. Додавання міді до середовища для пророщування насіння ймовірно підвищує неселективну проникність мембрани та спричинює її деполяризацію. Це може активувати Са-канали, що активуються за умов деполяризації та відповідають за надходження кальцію до цитоплазми з апопласту. Підвищення рівня МДА свідчить про наявність окисного стресу, який може активувати гіперполяризаційні Са-канали, що також впливають на [Ca2+]cyt. Таким чином, зміни інтенсивності Са2+-залежних метаболічних процесів (регуляція поділу клітин та ріст кореня) можуть бути наслідком токсичного впливу іонів Cu2+ на рослини озимої пшениці.

Highlights

  • Вплив Cu2+ та кислотності середовища на вміст цитоплазматичного кальцію та перекисне окиснення ліпідів у коренях озимої пшениці

  • The study investigates the effect of copper ions and pH of external solution on intracellular calcium homeostasis and lipid peroxidation in winter wheat roots

  • Sterile seeds were germinated in Petri dishes on the filter paper soaked with acetic buffer at Fluo-3/AM

Read more

Summary

Матеріал і методи досліджень

Стерилізоване (опромінювач бактерицидний ОБН35м) насіння озимої пшениці сорту Смуглянка (Triticum aestivum L.) пророщували у чашках Петрі на двошаровому фільтрувальному папері, змоченому стерильним середовищем із рН 4,7 та 6,2 (5 мМ ацетатний буфер) у темряві, за +20 oС протягом 48 год (хладотермостат ХТ 3/70-2). На 48-му годину проводили обробку CuSO4 (50 мкМ). Завантаження коренів флуоресцентним індикатором Fluo-3AM (Sigma) робили за методикою, описаною Zhang et al (1998). Розчин для інкубації містив 20 мкМ Fluo-3AM, 0,2 мМ СаСl2 та 50 мМ сорбітолу. Розчин Fluo-3 AM додано з вихідного розчину 1 мМ Fluo-3AM у ДМСО. Після інкубування корені змивали буферним розчином протягом 15 хв. Флуоресценцію коренів, пофарбованих Fluo-3 AM, досліджували за допомогою мікроскопа Olympus BX53 із люмінесцентним блоком X-Cite Series 120 Q і камерою-детектором Olympus DP72 за довжини хвилі збудження 488 нм, хвилі емісії – 512 нм (зелений світлофільтр). Рівень ПОЛ визначали за накопиченням малонового діальдегіду (МДА) методом Kumar and Knowles (1993) із деякими модифікаціями. Суху біомасу визначали відповідно до ГОСТ 16932-93. Статистичну обробку даних робили за допомогою програми Statistica 6.0

Результати та їх обговорення
Бібліографічні посилання

Talk to us

Join us for a 30 min session where you can share your feedback and ask us any queries you have

Schedule a call

Disclaimer: All third-party content on this website/platform is and will remain the property of their respective owners and is provided on "as is" basis without any warranties, express or implied. Use of third-party content does not indicate any affiliation, sponsorship with or endorsement by them. Any references to third-party content is to identify the corresponding services and shall be considered fair use under The CopyrightLaw.