Опыт ксенотрансплантационного гетеротопического моделирования колоректального рака различных клеточных типов у бестимусных мышей линии BALB/c nude

Abstract

Введение. Высокий уровень заболеваемости колоректальным раком стимулирует поиск методов его своевременной диагностики и эффективной терапии, что, в свою очередь, предполагает использование адекватных животных моделей на стадиях разработки и доклинических исследований. Методика. Для моделирования гетеротопических ксенографтов были использованы клеточные культуры колоректального рака человека линий DLD-1, HCT 116 и HT-29. В качестве носителей опухолевых моделей были взяты мыши линии BALB/c nude. Суспензию клеток вводили подкожно в область лопатки с помощью шприца. Результаты. Полученные из Американской коллекции типовых культур (ATCC) клетки культивировали до достижения необходимого количества для моделирования ксенографтов (20 сут). Клетки линии HCT-116 культивировались активнее и образовывали монослой в 3 раза быстрее, чем клетки линии DLD-1 и HT-29. Выживаемость мышей после проведения процедуры подкожной ксенотрансплантации составляла 100%. Образование ксенографтов объемом около 1 см3 наблюдали на 17-е - 26-е сут после прививания клеток. Приживаемость введённых клеток составила 100% для линии HCT-116. Для клеток колоректального рака человека линий DLD-1 и HT-29 приживаемость составила 75% и 60%, соответственно. Заключение. При экспериментальном моделировании подкожных гетеротопических ксенографтов колоректального рака человека на мышах линии BALB/c nude была получена высокая степень воспроизводимости при 100%-ной выживаемости животных-носителей. Introduction. The high prevalence of colorectal cancer (СС) stimulates scientists and physicians to search methods for СС diagnosis and effective therapy, which requires appropriate animal models at the stage of development and preclinical studies. Methods. CC cell cultures (DLD-1, HCT 116, and HT-29) were used for heterotopic xenograft modeling in BALB/c nude mice. The cell suspension was injected subcutaneously with a syringe. Results. CC cells from ATCC (American Type Culture Collection) were cultivated until obtaining the required number of cells for xenograft modeling (20 days). The HCT-116 cell culture developed more actively and formed a monolayer three times faster than DLD-1 and HT-29 cells. Survival of the mice after subcutaneous transplantation was 100%. Xenografts of approximately 1 cm3 volume formed at 17-26 days after grafting. Transplantability of the injected cells was 100% for HCT-116, 75% for DLD-1, and 60% for HT-29. Conclusion. The experimental modeling of subcutaneous heterotopic CC xenografts in BALB/c nude mice showed a high level of reproducibility with absolute 100% - survival of recipient mice.